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谁是小小
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壁虎荡秋千

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道生一,三代二

医学核心期刊是指经中国新闻出版总署审批准后公开发行的医学学术期刊,经各高校、医学研究所、医学行政机关等机构根据期刊刊录文稿被摘引率等系统的对期刊按医学学科进行评定。因国内医学学科核心评定标准不同,所以医学核心期刊目录也不尽相同。期刊类目医学核心期刊封面(3张)核心期刊 第五编 医药、卫生R 综合性医药卫生R1 预防医学、卫生学R2 中国医学R3 基础医学R4/8 临床医学/特种医学R9 药学综合性医药卫生类核心期刊1、中华医学杂志2、第四军医大学学报3、第三军医大学学报4、第二军医大学学报5、第一军医大学学报(改名为:南方医科大学学报)6、解放军医学杂志7、北京大学学报.医学版8、吉林大学学报.医学版9、四川大学学报.医学版10、中国医学科学院学报11、中国现代医学杂志12、复旦学报.医学版13、华中科技大学学报.医学版14、中山大学学报.医学科学版15、中南大学学报.医学版16、西安交通大学学报.医学版17、浙江大学学报.医学版18、南京医科大学学报.自然科学版19、广东医学20、军事医学科学院院刊21、上海第二医科大学学报(改名为:上海交通大学学报.医学版)22、上海医学23、郑州大学学报.医学版24、江苏医药25、山东大学学报.医学版26、中国医科大学学报27、实用医学杂志28、山东医药29、哈尔滨医科大学学报30、重庆医学31、重庆医科大学学报32、天津医药33、安徽医科大学学报34、苏州大学学报.医学版35、武汉大学学报.医学版36、首都医科大学学报37、医学与哲学.人文社会医学版预防医学、卫生学类核心期刊1、中国公共卫生2、中华医院感染学杂志3、中华流行病学杂志4、卫生研究5、营养学报6、中华预防医学杂志7、中华劳动卫生职业病杂志8、中华医院管理杂志9、环境与健康杂志10、工业卫生与职业病11、中国卫生统计12、中国工业医学杂志13、中国职业医学14、环境与职业医学15、国外医学卫生学分册16、中国卫生经济17、毒理学杂志18、中国计划生育学杂志19、中国食品卫生杂志20、现代预防医学21、中国慢性病预防与控制22、中国妇幼保健23、中国学校卫生24、中国血吸虫病防治杂志25、中国卫生事业管理26、生殖与避孕中国医学类核心期刊1、中草药2、中国中药杂志3、中国中西医结合杂志4、中国针灸5、中成药6、北京中医药大学学报7、中药材8、中国中医基础医学杂志9、中药药理与临床10、中华中医药杂志11、针刺研究12、中药新药与临床药理13、南京中医药大学学报14、中国实验方剂学杂志15、辽宁中医杂志16、时珍国医国药17、中医杂志18、新中医19、中国中西医结合急救杂志20、中国天然药物基础医学类核心期刊1、中国病理生理杂志2、中华微生物和免疫学杂志3、生物医学工程学杂志4、解剖学报5、中国免疫学杂志6、免疫学杂志7、细胞与分子免疫学杂志8、中国临床解剖学杂志9、生理学报10、解剖学杂志11、中国心理卫生杂志12、中国生物医学工程学报13、中国人兽共患病杂志(改名为:中国人兽共患病学报)14、生理科学进展15、中华病理学杂志16、神经解剖学杂志17、现代免疫学18、病毒学报19、中国寄生虫学与寄生虫病杂志20、中国应用生理学杂志21、国外医学.免疫学分册(改名为:国际免疫学杂志)22、中华医学遗传学杂志23、中华实验和临床病毒学杂志24、国外医学.生物医学工程分册(改名为:国际生物医学工程杂志)25、基础医学与临床临床医学类核心期刊1、中国危重病急救医学2、中国医学影像技术3、中国临床康复(改名为:中国组织工程研究与临床康复)4、中华检验医学杂志5、中国超声医学杂志6、中华超声影像学杂志7、中华物理医学与康复杂志8、中华护理杂志9、临床检验杂志10、临床与实验病理学杂志11、中国康复医学杂志12、中国急救医学13、检验医学14、中华急诊医学杂志15、中国全科医学16、中国实用护理杂志17、中国医学影像学杂志18、中国输血杂志19、中国实验诊断学20、中国临床医学影像杂志21、护士进修杂志内科学类核心期刊1、中华结核和呼吸杂志2、中华内科杂志3、中华心血管病杂志4、中华内分泌代谢杂志5、中华血液学杂志6、中华肝脏病杂志7、中华消化杂志8、中国地方病学杂志9、中华肾脏病杂志10、中华老年医学杂志11、中华糖尿病杂志(改名为:中国糖尿病杂志)12、世界华人消化杂志13、中华传染病杂志14、中华风湿病学杂志15、中国实用内科杂志16、中国动脉硬化杂志17、中国循环杂志18、高血压杂志(改名为:中华高血压杂志)19、中国老年病杂志20、临床心血管病杂志21、中国内镜杂志22、肠外与肠内营养23、中国心脏起搏与心电生理杂志24、中华消化内镜杂志外科学类核心期刊1、中华外科杂志2、中华骨科杂志3、中华泌尿外科杂志4、中华创伤杂志5、中国实用外科杂志6、中华实验外科杂志7、中华显微外科杂志8、中华神经外科杂志9、中国修复重建外科杂志10、中华烧伤杂志11、中华麻醉学杂志12、中华胸心血管外科杂志13、中华普通外科杂志14、中华手外科杂志15、中国矫形外科杂志16、中华整形外科杂志17、中国脊柱脊髓杂志18、中国器官移植杂志19、中国普通外科杂志20、肾脏病与透析肾移植杂志21、中华肝胆外科杂志22、临床泌尿外科杂志23、临床麻醉学杂志24、中华胃肠外科杂志25、中国微侵袭神经外科杂志26、中华男科学杂志妇产科学类核心期刊1、中华妇产科杂志2、中国实用妇科与产科杂志3、实用妇产科杂志4、现代妇产科进展儿科学类核心期刊1、中华儿科杂志2、中国实用儿科杂志3、临床儿科杂志4、实用儿科临床杂志5、中华小儿外科杂志6、中国当代儿科杂志肿瘤学类核心期刊1、中华肿瘤杂志2、癌症3、中国肿瘤临床4、肿瘤5、中华放射肿瘤学杂志6、中国肿瘤生物治疗杂志7、肿瘤防治研究8、中国癌症杂志9、实用肿瘤杂志神经病学与精神病学类核心期刊1、中华神经科杂志2、中国神经精神疾病杂志3、中华精神科杂志4、中风与神经疾病杂志5、中国行为医学科学6、临床神经病学杂志7、中华老年心脑血管病杂志8、国外医学.脑血管疾病分册(改名为:国际脑血管病杂志)9、中华神经医学杂志皮肤病学与性病学类核心期刊1、中华皮肤病杂志2、临床皮肤科杂志3、中国皮肤性病学杂志耳鼻咽喉科学类核心期刊1、中华耳鼻咽喉头颈外科杂志2、临床耳鼻咽喉科杂志(改名为:临床耳鼻咽喉头颈外科杂志)3、听力学及言语疾病杂志4、中国耳鼻咽喉头颈外科眼科学类核心期刊1、中华眼科杂志2、中华眼底病杂志3、中国实用眼科杂志4、眼科研究5、眼科新进展口腔科学类核心期刊1、中华口腔医学杂志2、华西口腔医学杂志3、实用口腔医学杂志4、牙体牙髓牙周病学杂志5、口腔医学研究特种医学类核心期刊1、中华放射学杂志2、临床放射学杂志3、实用放射学杂志4、中华核医学杂志5、中国运动医学杂志6、中华放射医学与防护杂志7、航天医学与医学工程8、中国医学计算机成像杂志9、放射学实践10、介入放射学杂志药学类核心期刊1、药学学报2、中国药学杂志3、中国药理学通报4、药物分析杂志5、中国新药杂志6、中国新药与临床杂志7、中国医院药学杂志8、中国医药工业杂志9、中国药科大学学报10、中国抗生素杂志11、沈阳药科大学学报12、中国药理学与毒理学杂志13、中国临床药理学杂志14、中国药房15、中国生化药物杂志16、中国现代应用药学17、华西药学杂志[2]投稿须知作品内容来稿内容、字数不限,任何形式皆可,如散文、诗歌、小说、剧本、评论、论文、游记等。投稿作品必须出自原创,并且在中国期刊网首发,不得作假,一经发现,将取消作者的投稿资格,情节严重者,将在首页进行公布。投稿者若有抄袭、模仿他人作品等侵犯他人知识产权的;或者稿件内容侵犯他人名誉权、隐私权、人格权的,由投稿者承担相应法律责任。作品发表要求:期刊网网站保留审稿、退稿和修改稿件的一切权力。期刊不接受含有下列内容之一的作品:1、反对宪法所确定的基本原则的;2、危害国家安全,泄露国家秘密,颠覆国家政权,破坏国家统一;3、损害国家荣誉和利益的;4、煽动民族仇恨、民族歧视,破坏民族团结;5、破坏国家宗教政策,宣扬邪教和封建迷信;6、散布谣言,扰乱社会秩序,破坏社会稳定;7、散布淫秽、色情、赌博、暴力、凶杀、恐怖或者教唆犯罪;8、侮辱或者诽谤他人,侵害他人合法权益;9、含有法律、行政法规禁止的其他内容;版权要求1、所有作品无论是否发表,作者均依照《中华人民共和国著作权法》享有著作权。2、所有投稿作品中国期刊网及其相关合作机构(包括网站、出版物、移动网络等),享有有使用权。

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暴脾气媛媛

抗坏血酸抑制核因子κB受体活化子配体诱导细胞的分化和功能肖新华 周厚德 袁凌青 谢辉 廖二元作者单位:410011长沙,中南大学湘雅二医院代谢内分泌研究所【摘要】 目的 研究抗坏血酸对核因子κB受体活化子配体(RANKL)诱导体外培养的破骨前体细胞形成成熟多核破骨细胞的影响,探讨抗坏血酸在破骨前体细胞分化中的作用及机制。 方法 利用不同浓度的抗坏血酸与RANKL单独或共同处理细胞,MTT法测定细胞增殖,抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)染色法观察TRAP阳性多核细胞,逆转录-聚合酶链反应(RT-PCR)测定破骨细胞表型基因和功能基因的表达,Western印迹方法检测碳酐酶Ⅱ基因蛋白表达,破骨细胞的骨吸收功能用骨吸收陷窝面积计数法分析。 结果 抗坏血酸和RANKL都抑制细胞的增殖 (P<),但它们之间无协同作用。抗坏血酸本身不能诱导细胞形成破骨细胞,但可抑制RANKL诱导的TRAP阳性多核破骨细胞形成(P<)。抗坏血酸下调RANKL诱导的碳酐酶Ⅱ和 RANK基因 mRNA表达及碳酐酶Ⅱ基因蛋白表达,抑制骨吸收功能(P<)。 结论 抗坏血酸能直接抑制RANKL诱导的破骨细胞形成和功能。【关键词】 抗坏血酸; 破骨细胞; 骨吸收抗坏血酸(AA)是一种重要的营养素和氧化还原剂,在骨盐代谢及骨形成中具有重要作用。在体外,它能增加钙盐的沉积,促进矿化结节的形成,并通过间充质细胞间接调节破骨细胞的分化〔1-4〕。流行病学调查表明,饮食中抗坏血酸的摄入与骨密度(尤其是绝经后妇女)呈正相关〔5,6〕。抗坏血酸在骨重建中的作用十分重要,但其细胞生物学机制仍不清楚。虽然在鼠的骨髓细胞与ST2基质细胞共培养下,它可通过ST2细胞表达核因子κB受体活化子配基(RANKL)诱导破骨细胞形成〔1〕,但是否可不通过成骨/基质细胞而直接作用于破骨前体细胞,进一步影响破骨细胞的分化和功能目前尚不清楚。本研究旨在探讨抗坏血酸对RANKL诱导破骨前体细胞分化为成熟破骨细胞的影响及机制。材料与方法一、细胞培养小鼠的单核细胞系细胞(ATCC号:TIB-71)用含10% 胎牛血清(FBS,美国GIBCO公司)的无酚红DMEM (美国Promega公司)培养液培养,其中含50 U/ml青霉素和50 μg/ml庆大霉素。3 d换液1次, 细胞汇片后, 用胰酶二乙胺四乙酸(EDTA)消化液消化细胞,根据不同的实验目的接种于不同规格的培养板上。二、细胞增殖测定接种于96孔板的细胞用抗坏血酸(美国Sigma-Aldrich公司)和/或RANKL(美国Pierce公司)干预48 h后,每孔加入MTT(5 mg/ml,美国Sigma-Aldrich公司) 20 μl, 继续培养4 h后弃上清,加人二甲亚砜(DMSO)150 μl/孔孵育10 min, 在酶标仪上测570 nm波长下的吸光值。三、破骨细胞形成分析RAW 细胞以1×104/孔接种于6孔板,培养过夜后分别用50 ng/ml RANKL和不同浓度(10~100 μg/ml)的抗坏血酸干预,细胞每3 d换液1次。第6天抗酒石酸酸性磷酸酶(TRAP)染色(美国Sigma-Aldrich公司,387-A),细胞用柠檬酸盐/丙酮溶液固定30 s, 在以萘酚AS�BI磷酸盐作为底物的孵育液中37°C孵育1 h,蒸馏水洗3次,苏木素复染2 min,干燥后二甲苯透明,DPX(聚苯乙烯+酞酸丁二酯+二甲苯)封固,光镜观察。显微镜下计数TRAP阳性多核破骨细胞(≥3个核)。四、骨吸收陷凹分析接种于钙磷覆盖的破骨细胞活性分析板(OAAS)(美国OCT公司),100 ng/ml RANKL和抗坏血酸干预细胞6 d后,弃上清,磷酸盐缓冲液(PBS)洗涤,5%次氯酸钠孵育5 min,PBS漂洗。干燥后采集骨吸收凹陷图像,骨吸收面积用Image Pro-Plus软件(美国Media Cybernetics公司)分析。五、RNA提取和半定量逆转录聚合酶链反应(RT-PCR)用Trizol(美国Gibco公司)按操作说明提取细胞总RNA,用无RNA酶的DNA酶 I 消化痕量DNA,二乙基焦碳酸(DEPC)处理水溶解RNA。在Gene Amp 2400 PCR扩增仪上进行RT-PCR。取μg总RNA, 用逆转录试剂盒(美国Promega公司)合成cDNA, 再行PCR扩增RANK, 基质金属蛋白酶9(MMP9), 肿瘤坏死因子受体相关因子6(TRAF6),TRAP,整合素αv ,整合素β3 , 组织蛋白酶K,碳酐酶Ⅱ, 扩增条件及引物序列见表1, 引物由上海博亚生物工程有限公司合成。半定量RT-PCR测定以β-肌动蛋白作为内部质控。PCR产物用琼脂糖电泳,溴乙啶染色后于紫外灯下拍照。表1 PCR引物及退火温度基因 正向引物 (5′→3′) 反向引物(5′→3′) 退火温度(℃) TRAP ACACAGTGATGC-TGTGTGGCAACTC CCAGAGGCTTCC-ACATATATGATGG 57 蛋白酶k CTGAAGATGCTT-TCCCATATATGGG GCAGGCGTTGTT-CTATTCCGAGC 56 RANK ACCTCCAGTCAG-CAAGAAGT TCACAGCCCTCA-GAATCCAC 57 MMP-9 CGAGTGGACGCG-ACCGTAGTTGG CAGGCTTAGAGC-CACGACCATACAG 64 β-肌动蛋白 GAAGAGCTATGA-GCTGCCTG CACAGAGTACTT-GCGCTCAG 57 碳酐酶Ⅱ CTTCAGGACAAT-GCAGTGC ATCCAGGTCACA-CATTCCAGC 55 TRAF6 AGCCCACGAAAG-CCAGAAGAA CCCTTATGGATT-TGATGATGC 53 整合素αv GCCAGCCCATTG-AGTTTGATT GCTACCAGGACC-ACCGAGAAG 55 整合素β3 TTACCCCGTGGA-CATCTACTA AGTCTTCCATCC-AGGGCAATA 53六、Western 印迹用细胞裂解液(150 mmol/L NaCl, 50 mmol/L Tris, pH , 1% NP-40, 去氧胆酸钠, 1 mmol/L苯甲基磺酰氟(PMSF), 1 mmol/L NaVO4, 2 mmol/L EGTA, 50 μg/ml 亮抑酶肽)冰上孵育裂解细胞20 min, 将匀浆于10 000 r/min,4℃离心5 min。BCA蛋白定量试剂盒(美国Pierce公司) 定量后,各取50 μg蛋白于10%十二烷基磺酸钠-聚丙烯酰胺凝胶(SDS-PAGE)电泳,转膜至PVDF膜(美国Millipore公司),含5%脱脂奶的PBST(含 吐温-20的PBS) 封闭液室温下振荡2 h,抗碳酐酶Ⅱ的抗体(1∶〖KG-*2〗1000)(美国Santa Cruz公司)孵育3 h, 含辣根过氧化酶标记二抗 (1∶5000) (美国Santa Cruz公司)孵育1 h, PBST室温下漂洗15 min后,化学发光法显影(美国Santa Cruz公司)。七、统计分析以上数据以 ±s表示,各组间比较采用One-way ANOVA过程的LSD法。结果一、抗坏血酸抑制细胞增殖抗坏血酸在10~100 μg/ml浓度范围内有促进细胞增殖的趋势,但差异无显著意义。高浓度的抗坏血酸(500 μg/ml)明显抑制细胞增殖(± vs ±,P<,图1A)。RANKL明显抑制细胞增殖(± vs ±),但抗坏血酸10~100 μg/ml浓度与RANKL无协同作用(图 1B)。注:除对照外,每组为AA(μg/ml)加RANKL 50 ng/ml图1 抗坏血酸对细胞的增殖作用对细胞增殖的影响(与对照组相比, **P<);B. AA联合/或RANKL对细胞增殖的影响(与对照组相比, *P<)二、抗坏血酸抑制RANKL诱导的细胞形成破骨细胞单独应用抗坏血酸不能使细胞形成TRAP阳性多核破骨细胞,但10~100 μg/ml浓度抗坏血酸均能抑制RANKL诱导细胞形成破骨样多核细胞(P<,图2)。注:每组为AA(μg/ml)加RANKL 50 ng/ml浓度图2 抗坏血酸(AA)对RANKL诱导细胞形成TRAP阳性多核细胞影响,与AA0组比较, *P<三、抗坏血酸选择性下调破骨细胞特征性基因mRNA的表达细胞受RANKL刺激后碳酐酶Ⅱ ,组织蛋白酶K, TRAP mRNA的表达均明显增加(分别为10、 和 倍)。抗坏血酸单独能上调组织蛋白酶 K, TRAP mRNA的表达(分别为和倍)。然而,RANKL与抗坏血酸合用与单用RANKL相比,前者明显抑制碳酐酶II和 RANK mRNA表达(分别为60%和20%)。MMP9, 整合素 αv 、整合素 β3 ,TRAF6基因不受RANKL和抗坏血酸的影响(图3)。四、抗坏血酸抑制破骨细胞骨吸收抗坏血酸不能诱导细胞形成破骨细胞,故无骨吸收陷窝。抗坏血酸和RANKL合用与单用RANKL组相比,骨吸收陷窝的数目及面积明显减少(P<,图4)。五、碳酐酶Ⅱ蛋白表达碳酐酶Ⅱ蛋白的表达光密度比,对照组、AA(50 μg/ml)组、RANKL(50 ng/ml)组、RANKL (50 ng/ml)+AA(10 μg/ml)组、RANKL(50 ng/ml)+AA(50 μg/ml)组分别为±、±、±、±±。RANKL组与对照组相比,碳酐酶Ⅱ蛋白表达无明显增加。低浓度的抗坏血酸(10 μg/ml)与RANKL合用与单用RANKL相比,碳酐酶Ⅱ蛋白表达明显减 50 ng/ml; 50 ng/ml+AA 50 μg/ml; 50 μg/ml;4.对照组图3 破骨细胞表型基因和功能基因的表达注:每组为AA(μg/ml)加RANKL 100 ng/ml,与AOO组比较,*P<图4 抗坏血酸对破骨细胞骨吸收活性的影响少(P<)。讨 论尽管抗坏血酸的发现与应用已有200多年,但其在人类健康和疾病中的意义与作用机制尚未完全阐明,研究结论不一致。了解抗坏血酸调节成骨细胞和破骨细胞的分化和功能的分子机制有重要意义。抗坏血酸是胶原合成的原料, 参与脯氨酸羟化以合成胶原,缺乏时可导致脯氨酸和赖氨酸羟化作用减弱从而影响胶原的合成,同时还是成骨细胞标志物表达和矿化所必需〔7-9〕。抗坏血酸在胶原合成中起关键作用,又是胶原翻译后修饰酶所需的羟化酶和单氧酶的协同因子〔10,11〕。最近,我们的研究发现,抗坏血酸协同并上调雌激素增加成骨细胞OPG基因表达与碱性磷酸酶(ALP)活性〔12〕。而抗坏血酸对破骨细胞的分化及功能的研究了解较少。有研究认为,抗坏血酸在破骨细胞发生的过程中发挥生理作用,可能依赖于其氧化还原特性,促进羟化反应以维持金属离子活化中心保证羟化酶和单氧酶的活性〔1〕。基质细胞与骨髓细胞共培养时,抗坏血酸与1α,25(OH)2D3 联用与单用1α,25(OH)2D3相比,前者的破骨细胞分化明显增加,基质细胞的RANKL mRNA表达量较后者增加了倍〔1〕。Ragab等的研究结果表明,抗坏血酸可使破骨前体细胞TRAP表达及融合成成熟的多核破骨细胞增加,其作用是通过调节间充质细胞的分化状态而间接支持破骨细胞分化〔4〕。目前,许多体外破骨细胞形成体系采用基质/成骨细胞与破骨前体细胞共培养,因此并不清楚抗坏血酸能否不通过基质/成骨细胞而直接作用于破骨前体细胞影响破骨细胞的形成。我们采用的RANKL诱导破骨前体细胞细胞形成破骨细胞可避免了基质/成骨细胞对破骨细胞的干扰。抗坏血酸本身不能诱导细胞形成破骨细胞,但与RANKL合用明显抑制破骨细胞形成和功能,其详细机制尚不清楚。由于抗坏血酸可促进成骨细胞合成胶原从而促进骨形成,在有基质/成骨细胞的条件下促进破骨前体细胞分化有利于骨吸收,而我们发现抗坏血酸不但可抑制破骨前体细胞的增殖,还可抑制破骨前体细胞的分化和功能而抑制骨吸收,因此抗坏血酸在成骨与破骨的生理调节中作用应是这3种作用的综合,在人体和动物模型上最终表现为有利于成骨作用。抗坏血酸在体外无基质/成骨细胞条件下抑制破骨前体细胞分化成成熟破骨细胞, 这一发现可能为抗坏血酸在骨代谢中的生理作用提供又一机制。参考文献1 Otsuka E, Kato Y, Hirose S, et al. Role of ascorbic acid in the osteoclast formation: induction of osteoclast differentiation factor with formation of the extracellular collagen matrix. Endocrinology, 2000,141: Udagawa N, Takahashi N, Akatsu T, et al. Oringin of osteoclasts:mature monocytes and macrophages are capable of differentiating into osteoclasts under a suitable microenvironment prepared by bone marrow�derived stromal cells. Proc Natl Acad Sci,1990,87, Suda T,Takahashi N, Martin TJ. Modulation of osteoclast differentiation,Endocr Rev,1992,13, Ragab AA,Lavish SA,Banks MA, et al. Osteoclast differentiation requires ascorbic acid. J Bone Miner Res,1998,13, Ilich JZ, Brownbill RA, Tamborini L. Bone and nutrition in elderly women: protein, energy, and calcium as main determinants of bone mineral density. Eur J Clin Nutr, 2003,57: Morton DJ, Barrett�Connor EL, Schneider DL. Vitamin C supplement use and bone mineral density in postmenopausal women. J Bone Miner Res,2001,16: Xiao G, Cui Y, Ducy P, et al. Ascorbic acid�dependent activation of the osteocalcin promoter in MC3T3�E1 preosteoblasts: requirement for collagen matrix synthesis and the presence of an intact OSE2 sequence. Mol Endocrino,1997,111: Takeuchi Y, Nakayama K, Matsumoto T. Differentiation and cell surface expression of transforming growth factor-b receptors are regulated by inter�action with matrix collagen in murine osteoblastic cells. J Biol Chem, 1996,271: Takeuchi Y, Suzawa M, Kikuchi T,et al. Differentiation and transforming growth factor-b receptor down-regulation by collagen�a2b1 integrin interaction is mediated by focal adhesion kinase and its downstream signals in murine osteoblastic cells. J Biol Chem,1997,272: Navas P, Villalba JM, Cordoba F. Ascorbate function at the plasma membrane. Biochem Biophys Acta,1994, 1197: Franceschi role of ascorbic acid in mesenchymal differentiation. Nutr Rev,1992,50: Zhou HD, Liao EY, Deng XG, et al. 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