TATA木门韩林
文献来源于19年的Nature Communication:RNA m6A methylation regulates the epithelial mesenchymal transition of cancer cells and translation of Snail ,
记录一下文章的设计思路:
体外用TGF-β驯化细胞并证明其处于EMT状态,LC-MS/MS证明m6A在EMT和普通癌症状态下的细胞中修饰水平不一致,用dot-plot辅助证明。(一共4个细胞系,2主要HeLa,HepG2,2补充,Huh7,A549) 只在一个细胞系(HeLa)中利用crispr突变转移酶Mettl3,发现其m6A水平降低。 表型实验划痕,体外侵袭同样受到抑制。(此外还做了sh和si重复)。利用qP和WB检测EMT相关基因的mRNA和蛋白表达情况,这里是MMP2和FN,E-cad。(同样做了4个细胞系)
过表达另一个酶ALKBH5(去甲基化酶),在HeLa中FN和MMP2的mRNA水平降低。WB发现相关蛋白的表达趋势和突变Mettl3相反。
接下来实验发现TGF-β导致的E钙粘下降和FN上升这种现象,由于m6A甲基化酶被突变后,E钙粘和FN的表达回补(与con没有显著差别)了。
在TCGA数据里面看肝癌和正常样本的METTL3表达情况,在肝癌中更高。 这里用病人和其匹配的正常样本来看的 。 在总的肝癌样本中,CDH1和METTLE3的表达成负相关
结合生物学知识,已知TGF-β通过Smad2/3会和METTL3-METTL14-WTAP复合物作用诱导mRNA甲基化。用LC/MS/MS检测用Smad2/3抑制剂SB431542处理后的HeLa细胞,发现由于TGF-β诱导m6A的水平上升被阻滞了。
以上全部数据说明mRNA的m6A水平会调节癌细胞的EMT进程
m6A-seq绘制EMT细胞的甲基化组(至少要有2组重复)。m6A motif CGAC在各组的情况。 m6A peaks的归属,比如5' UTR,CDS,终止密码子和3'UTR上面 (peak density)。在出现EMT和control的细胞中(即TGF-β处理组和原始组)发现不同的m6A peak分布,某些修饰是新出现的,某些消失了。 对m6A unique的基因进行富集分析,发现其在adheres junction等上面富集。
取交集,EMT相关基因84个(MSIGDB),m6A-seq在EMT细胞中高表达(>2 logfc)61个。确定一个关键靶基因SNAI1,并可视化m6A-seq在该基因的富集结果(富集在CDS和3'区域)。随后用m6A RNA免疫共沉淀(RIP)-qPCR验证结果可靠性。有意思的是还找了一个ZEB1作为negative control,用来说明没有被富集?(Sfig)
在WT和敲掉Mettl3的细胞系里面用WB验证,发现Snail蛋白水平下降,阴性对照(没有甲基化修饰的基因)蛋白水平基本不变,同时在转染AKLBH5(过表达)和对照组的HeLA中进行WB,发现同样的趋势。
确定这个情况后,在TGF-β处理过的细胞系里面进行transwell实验,分别设计对照、敲掉Mettl3、pcDNA过表达Snail和Mettl3敲掉+pcDNA四组,发现敲掉Mettl3细胞体外迁移能力降低,但是过表达snail回补,证明了snail在Mettl3的甲基化介导下发挥促转移的功能。最后,WB实验发现过表达Snail后,敲掉METTL3的细胞中,FN下降,E钙粘上升,这两个基因的现象和转移能力减弱有关。
前面是表型,从这里开始做机制研究
先看WT和敲METTLE3后,Snail的前体、成熟mRNA的表达量,惊讶的发现其不降反升了(和蛋白水平出现显著差别)。验证了promoter activity发现敲没敲的能力一样,这个结果说明Snail的转录不受m6A影响(?敲掉了后mRNA水平反而上升,虽然启动子的功能不受改变)
核质分离结果发现,WT和敲掉METTL3细胞系中,SNAI1 mRNA在核内、胞质中分布差不多。
利用Act-D抑制转录,发现前体和成熟mRNA的半衰期在WT里面比敲掉METTL3的细胞系低。即m6A修饰引起Snail前体mRNA剪接和成熟RNA的降解(引起剪接的结论是如何得到的?)。随后用YTHDF2,一种甲基化酶reader来看成熟Snail mRNA上的甲基化水平随时间变化,作为补充。
敲掉NETTL3后,SNAI1成熟的mRNA水平上升,但是蛋白水平却下降了,于是假设这种现象与蛋白稳定性或翻译效率的差别有关。随后在WT和敲掉Mettl3的细胞系中用蛋白翻译抑制剂cycloheximide(CHX)处理。WB显示两组蛋白降解情况差不多。预处理,用MG132抑制蛋白酶体活性或者CHX阻滞蛋白质翻译,再用TGF-β处理敲掉METTL3的HeLA。结果显示,CHX而不是MG-132减缓了敲掉METTL3中,TGF-β诱导的Snail表达。 已知TGF处理的细胞处理EMT状态,这个状态下snail甲基化更强,这里蛋白酶体抑制剂的功能就是不让甲基化酶甲基化snail的mRNA,但其蛋白水平上升了。翻译抑制剂CHX处理后没有明显相关性,说明TGF-β诱导的snail甲基化和增强其翻译的功能相同。(有点晕,很复杂)
创建了pmirGLO-Snail的双重-luciferase报告系统,发现Snail的翻译效率在敲掉METTLE的HeLa细胞中显著低于WT,提示m6A诱导的Snail表达与翻译调控相关。
随后,进行多核糖体图谱,结果显示敲掉METTL3后,非转录区域(<40S)升高,单核糖体(80S)以及转录活性多核糖体(>80S)下降。qPCR显示,对比WT,在敲掉METTL3的细胞中,多核糖体上的Snail mRNA显著降低。意味着敲低了METTL3,导致Snail mRNA甲基化水平降低,翻译效率下降。随后在TGF-β处理过的细胞上重复核糖体图谱实验,发现其诱使的m6A甲基化升高,导致polysome(>80)上面Snail mRNA升高(翻译升高)。 为了证明这个翻译效率的提高是否是mRNA加帽/不加帽调控的,用rapamycin(已知加帽翻译,对不加帽翻译不起作用)来处理METTLE敲除和WT细胞系。两者的蛋白水平没有明显区别。用CHX和rapamycin共处理WT细胞,Snail迅速降解,意味着rapamycin处理的细胞Snail1表达稳定,与蛋白质稳定性增加无关,而是与加帽翻译有关
在Snail mRNA的一个CDS区域和2个3’UTR区域鉴定出了m6Amotif GGAC,用m6A抗体从HeLa细胞分离的RNA片段做免疫共沉淀(IP)。发现Snail mRNA的m6A水平,从高到低分别是CDS,3'和5'UTR(这个怎么做到的?用不同区域的引物去P吗?)。为了深入研究m6A甲基化在SNAI1的3‘UTR区域上的作用,构建了luciferase报告系统,结果证明WT、MUT1、MUT2的3’UTR没有翻译差别。
共转染ALKBH5也没有改变WT、MUT1、MUT2的表达水平。因此m6A在3‘UTR上面可能不参与m6A介导的Snail 表达调控。
之后构建了snail CDS expression construct (表达载体,只包含重组蛋白的编码序列),并将其和pcDNA/ZEB1(阴性对照)共转。结果显示METTL3敲掉细胞的Snail表达显著下降,ZEB1没有收到影响。接下来构建了2个CDS的A到C突变,mut2作为对比。
mut1的snail水平对比WT和mut2,受影响的程度不显著(这个地方不能被甲基化了,但是蛋白水平相对上升了,这里一个tricky的地方是,相对光学密度,在WT里面突变CDS的mut1难道不会降低它的蛋白水平?)
然后用TGF-β处理共转染后的细胞,WB结果显示mut1的Snail水平相对于mut2来说变低了(相对是con/TGF-β in CDS-Mut1 vesus. con/TGF-β in CDS-Mut2这么来算的吧?)。这些结果说明CDS区域才是甲基化主要调控区域。
YTHDF1是m6A的read蛋白,用RIP-qPCR研究SNAI1和YTHDF1的相互作用。YTHDF1在SNAI1 mRNA上富集,但是在敲掉METTL3的细胞中富集程度被抑制。同时发现YTHDF1与snail的CDS区域作用比3‘UTR区域的更紧密。为了确认YTHDF1在m6A调控Snail表达的作用,用si敲掉了YTHDF1,发现敲掉后会缓解HeLa细胞中因TGF-β诱导的Snail表达。同样,过表达YTHDF1有相似的效果。
真核生物中的translation elongation由eEF-1和eEF-2实现,在这里也看了一下。Snail mRNA和eEF-2的结合在敲掉METTL3的细胞系中对比WT显著下降,eEF-1没有显著。co-IP结果与结论一致。上述结果表示,YTHDF1和eEF-2对于Snail mRNA的m6A诱导翻译延长相关。
动物实验。皮下注射sh-control和sh-Mettl3 Huh7细胞系。做免疫组化结果看Snail,FN,Vim的蛋白表达水平。尾静脉注射数肺肿瘤数量,结果与上述一致。 再构建HeLa WT和METTL3敲除,过表达snail的HeLa和敲除METTL3过表达Snail的HeLa。发现敲掉METTL3后,肺肿瘤数量减少,而过表达snail可以缓解敲掉METTL3的抑制作用。
最后在临床上面看了METTL3和YTHDF1在肝癌组织和对应的正常组织中的相关性改变。同时看了分期情况、生存预后数据。购买了一批组织芯片,观察IHC中METTL3和SNAIL的相关性。
shh小辣椒
能相关:1.原癌基因:指细胞内存在的、编码产物能促使正常细胞恶性转化的基因。如c-SIS、ERB、RAS、MYC、MYB、ERBA等基因,其表达产物为生长因子及其受体、蛋白激酶、G蛋白、 转录因子等细胞内调节生长、分化和凋亡的功能蛋白,主要功能为促进细胞增殖,抑制细胞分化和凋亡,只有在突变导致活性或者含量过高时才诱发肿瘤。2.病毒癌基因:存在与病毒内的能使正常细胞发生恶性转化的基因,由原癌基因转化而来,无内含子,与病毒生活史无关却能导致宿主发生恶性转化,常有点突变或缺失突变。3.抑癌基因:主要功能为抑制细胞增殖、促进细胞凋亡和分化。如RB、P53均能负调节细胞周期,后者还能促进细胞DNA损伤后的凋亡。4.肿瘤转移相关基因:主要指一些编码细胞表面受体的基因,它们的突变或失活会导致细胞粘附能力的下降,促使肿瘤的发生和转移。如MTSL基因、RAS基因、MYC基因等。
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